Способы забора материала для микробиологического исследования полости рта

Способы забора материала для микробиологического исследования полости рта

Лечение и реабилитация пациентов с воспалительными заболеваниями пародонта являются одной из наиболее сложных проблем в стоматологии, что находит подтверждение в огромном количестве предложенных для этих целей средств и методов, которые далеко не всегда оказываются эффективными и необходимости использования лекарственных антимикробных препаратов избирательного действия [3, 7, 12].

Для определения вида возбудителя, назначения эффективного лечения и его оценки необходим микробиологический анализ патологического материала. Кроме того, с помощью микробиологической диагностики врач сможет конкретизировать диагноз и составить прогноз развития болезни [14].

Наиболее важными показаниями к проведению микробиологической диагностики являются такие заболевания как:

1. Острый язвенно-некротический гингивит.
2. Хронический пародонтит с частым рецидивированием и абсцедированием.
3. Болезни паро- и периодонта, устойчивые к лечению.
4. Агрессивные формы болезней пародонта (препубертатный, ювенильный пародонтит, быстропрогрессирующий у взрослых).
5. Тяжелые формы патологии пародонта на фоне системных заболеваний.
6. Комплексное лечение заболеваний пародонта с проведением системной антимикробной терапии, лоскутных операций, в случаях сложного протезирования или внутрикостной имплантации зубов, связанных с большими финансовыми затратами.

Сегодня актуальна выработка стандартов диагностических исследований при заболеваниях пародонта, которые могут использоваться в повседневной практике врача-стоматолога [17].

Цель исследования: на основе данных литературы сделать обзор методов диагностики микрофлоры при заболеваниях пародонта, рассмотреть преимущества и недостатки каждого из методов, что даст возможность врачу-стоматологу выбрать тот метод, который будет отвечать его целям, экономическим и техническим возможностям.

Цитологический метод исследования

Содержимое пародонтального кармана изучают по методике П. М. Покровского и М. С. Макаровой в модификации И. А. Бенюмовой (1962). Пародонтальные карманы предварительно промывают изотоническим раствором хлорида натрия, стерильной корневой иглой с турундой производят забор материала.

Забор содержимого из корневого канала проводится на этапе механической обработки корневых каналов стерильным эндодонтическим инструментом (H-файлом) (методика А. А. Кунина, 2003) [16].

Исследуемый материал распределяется на предметном стекле. Препарат фиксируют смесью Никифорова и окрашивают по Граму и Гимзе-Романовскому. Далее материал высушивается и микроскопируется при помощи светового микроскопа [1, 6].

Преимущества: простота в использовании

Недостатки: не позволяет определить вид возбудителя и его чувствительность к антибактериальным препаратам

Метод жидкостной цитологии

Жидкостная тонкослойная цитология – это способ получения монослойных цитолологических препаратов при переносе клеток из фиксирующего или транспортного растворов с использованием методов центрифугирования, осаждения и/или фильтрации.

С помощью урогенитального зонда или стоматологических бумажных адсорбентов производится забор материала из пародонтального пространства. Материал сразу помещается в специальный контейнер (виалу) и отправляется в лабораторию. В лаборатории виалы в базовых штативах помещаются в цитопроцессор, проводится обработка цитологического материала с полным сохранением клеточных и субтканевых структур. Производят окрашивание по методу Папаниколау [10].

– быстрый и удобный микроскопический анализ: препарат занимает небольшую площадь, клетки располагаются в один слой, в скоплениях хорошо видна структура ядер;

– возможность неоднократного приготовления препаратов из одного и того же контейнера;

– более высокая информативность по сравнению с традиционным цитологическим методом за счет обеспечения сохранности клеточных структур.

– более высокая, по сравнению с традиционной цитологией, стоимость пробоподготовки;

– необходимость дополнительного оборудования для приготовления препаратов;

– необходимость дополнительного обучения для интерпретации результатов [8].

Бактериологический метод исследования

Забор содержимого пародонтального кармана проводят стерильной ватной турундой на глубине 2 мм. Затем концевую часть турунды промывают в 10 мл физиологического раствора и получают взвесь микроорганизмов [6].

Забор содержимого корневого канала проводится следующим образом. Коронку зуба очищают от зубного налета гигиенической полировочной щеткой с последующей обработкой 3 %-ой перекисью водорода. После препарирования кариозной полости, раскрытия полости зуба, обеспечения эндодонтического доступа в канале H-файлом № 15-20 инструментальными движениями с ирригацией физиологическим раствором создают суспензию инфицированного состава, которую забирают с помощью стерильного бумажного штифта [11].

Образцы полученных проб помещают в транспортные системы и в течение 24 часов доставляют в бактериологическую лабораторию. Далее делают секторальный посев по методике Мельникова-Царева на 5 % кровяном агаре Шедлера, для идентификации микроорганизмов в современных условиях используют специальные тест-системы [9]. Определяют чувствительность выделенных микроорганизмов к антибактериальным препаратам, а также к препаратам растений, действие которых активно изучают в последнее время [3, 5].

– позволяет установить видовой состав микрофлоры;

– возможность определения чувствительности микроорганизмов к определенным антибактериальным препаратам

– чувствительность к забору материала, транспортировке и условиям проведения

ПЦР

Сбор мягкого зубного налета производят методом смыва из пародонтального кармана (в случае патологии) или из десневой бороздки (в случае нормы) с помощью стерильных бумажных эндодонтических штифтов [15].

Сбор твёрдого зубного налета производят следующим образом. После предварительного полоскания ротовой полости водой проводят обработку ватным тампоном зуба с целью полного удаления мягкого налета и соскабливают поддесневой твердый налет, используя кюрету Грейси [14].

Исследуемый материал помещают в пробирки с транспортной средой, предварительная обработка материала не требуется. ПЦР проходит в 3 этапа: выделение ДНК/РНК, амплификация ДНК/РНК-фрагментов, детекция ДНК/РНК-продуктов амплификации. Современные ДНК/РНК тесты способны идентифицировать от 3 до 11 периодонтопатогенов [4, 11, 13, 17].

– возможность анализа до 96 образцов за один запуск (использование при скрининговых исследованиях большого числа пациентов) [2];

– не требует специальных транспортных сред (для проведения анализа необязательно присутствие живых микроорганизмов);

– быстрый результат (весь процесс с момента передачи в лабораторию занимает не более одного рабочего дня);

– за счет автоматической интерпретации полученных результатов снимается проблема субъективной оценки;

– возможность определения чувствительности к антибактериальным препаратам

– ограничение оценки лекарственной устойчивости (данные о конкретных генетических механизмах резистентности могут отсутствовать, резистентность к препаратам часто связана с различными механизмами и мутациями в различных генах, которые независимо влияют на фенотип);

– возможность ложноположительного результата в результате загрязнения исследуемого материала и ложноотрицательного результата в результате ингибирования реакции компонентами биологических образцов [9].

Таким образом, на клиническом приеме врач-стоматолог при лечении заболеваний пародонта в целях определения вида возбудителя, назначения эффективного лечения и его оценки может использовать различные методы микробиологической диагностики. Выбор определяется преимуществами и недостатками каждого метода. Цитологический метод позволяет определить только наличие микрофлоры без возможности определить вид возбудителя и чувствительность к противомикробным средствам. Метод жидкостной цитологии является более информативным, однако также не дает возможности определения чувствительности к противомикробным средствам и является более дорогим. Бактериологический метод позволяет установить видовой состав микрофлоры, определить чувствительность микроорганизмов к антибактериальным препаратам, но является еще более дорогим и имеет чувствительность к забору и транспортировке материала. Метод ПЦР позволяет с высокой точностью определить видовой состав микрофлоры, не требователен к забору и транспортировке материала, дает возможность определения чувствительности к антибактериальным препаратам, однако имеет высокую стоимость и возможны ложные результаты.

Источник

3.1. Способы забора материала для исследования микрофлоры полости рта

При диагностике заболеваний полости рта, вызванных патогенными микроорганизмами (дифтерийной палочкой, микобактериями, нейссериями, дрожжеподобными грибами рода Candida) используют традиционные методы: микроскопический, бактериологический, серологический, биологический, кожно-аллергические пробы.

Использование микробиологических методов при оппортунистических процессах (кариесе, пародонтите, афтозном стоматите и др.) направлено не на диагностику болезни, а на изучение этиологии и патогенеза этих весьма распространенных заболеваний и, соответственно, на рациональную их терапию.

При одонтогенных воспалительных процессах (периодонтитах, абсцессах, флегмонах и др.) эти методы могут быть использованы для контроля проводимого лечения, прогнозирования исхода болезни и определения чувствительности микробной ассоциации к антибиотикам.

При стоматологических заболеваниях в качестве исследуемого материала можно изучать зубную бляшку, ротовую жидкость, содержимое десневого желобка или патологического десневого кармана, материал из кариозной полости, корневых каналов, гранулемы, гнойное отделяемое, пунктаты, соскобы и мазки-отпечатки со слизистой оболочки или элементов поражения.

В практической стоматологии чаще исследуют мазки-отпечатки со слизистой оболочки, гнойное отделяемое, пунктаты. Учитывая, что полость рта омывается ротовой жидкостью, содержащей определенные виды бактерий, при заборе материала из различных участков следует исключить попадание в пробу слюны. Для этого исследуемую область обкладывают стерильными ватными тампонами. Перед забором материала нельзя обрабатывать полость рта бактерицидными препаратами, а также необходимо выяснить у больного, не принимал ли он в течение последних 3-х недель антибиотики.

Учитывая, что большая часть резидентов полости рта являются облигатными анаэробами, при взятии материала и его транспортировке необходимо соблюдать условия анаэробиоза.

Ведущую роль в развитии воспалительных заболеваний полости рта и челюстно-лицевой области играют облигатно-анаэробные и микроаэрофильные бактерии, что определяет необходимость обязательного использования техники анаэробного культивирования при диагностике данной патологии. Особое значение это имеет при гнойно-воспалительных процессах (флегмонах, абсцессах, фасциитах, остеомиелитах челюстно-лицевой области), когда адекватная антибактериальная терапия с учетом чувствительности выделенных из воспалительного очага бактерий является залогом успешного лечения больного в послеоперационном периоде.

Бактериологический метод исследования материала при данной патологии включает обычно параллельное поэтапное исследование в аэробных (традиционным методом) и анаэробных условиях. Для создания анаэробных условий в настоящее время обычно используют анаэростаты и газбоксы. Они представляют собой герметичные камеры, из которых с помощью вакуум-насоса откачивают атмосферный воздух, а затем заполняют бескислородными газовыми смесями. Оптимальной для развития облигатных анаэробов является смесь, состоящая из 80% азота, 10% углекислого газа, 10% водорода. Для нейтрализации остаточного кислорода в анаэростаты помещают палладиевые катализаторы, пирогаллол или другие химически редуцирующие кислород соединения.

Патологический материал при абсцессах, флегмонах и фасциитах берут пункцией с помощью толстой иглы и доставляют в лабораторию в шприце (воткнув иглу в стерильную резиновую пробку) или поместив в транспортную среду (Стюарта или тиогликолевую). В процессе оперативного вмешательства материал забирают с помощью стандартного ватного тампона, который помещают в транспортную среду. Транспортные среды, благодаря особенностям своего состава, обеспечивают резкое снижение метаболизма микробов и возможность длительного сохранения их жизнеспособности (от 6 до 12 часов).

Источник

Инструкции по правилам сбора биологического материала для микробиологических исследований

Общие требования

1. Проведение исследования и сбора материала до начала лечения антибиотиками, антисептиками, противогрибковыми препаратами.
2. Использование расходных материалов (контейнеров, пробирок, флаконов с питательными средами и транспортных систем в пробирках, сухих стерильных тампонов, направительных бланков), выдаваемых лабораторией ИНВИТРО.
3. Правильное хранение выданных транспортных сред (в холодильнике) и согревание до комнатной температуры перед использованием (примерно 30 минут).
4. Правильный выбор транспортной среды для каждого вида исследования. Информацию об используемых транспортных средах и других расходных материалах смотрите в разделе «Описание тестов».
5. Обязательная маркировка пробирок, контейнеров, флаконов и транспортных сред с указанием Фамилии И.О., даты рождения, даты и времени взятия материала и локализации, откуда получен образец.
6. При оформлении направительного бланка заполнение всех граф, с указанием локализации материала и номера теста. Информация на бланке и материале должны совпадать, иначе материал в работу не будет браться.
7. Соблюдение сроков и режима хранения проб, полученных для исследований.

Информация для гастроэнтерологов

Информация для гинекологов

Информация для урологов

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У МУЖЧИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Используйте только новые стекла с матовым краем, которые выдает лаборатория ИНВИТРО (или, если в нужный момент у вас не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые и чистые).
2. Перед тем, как взять мазок из уретры очень важно провести гигиеническую обработку кожи головки полового члена с помощью мыла и воды для уменьшения контаминации мазка посторонней флорой. После обработки осушить головку полового члена с помощью стерильной марлевой салфетки.
3. С помощью специальных инструментов, используемых в вашем медицинском центре, соберите отделяемое уретры, нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем.
4. Если исследуется секрет простаты, мазок наносится на стекло, распределяется равномерно тонким слоем.
5. Обязательно дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковывать перед отправкой.
6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения.
7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ МУЖЧИН

Для анализов №440, №444

1. Вымойте руки с мылом.
2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Если целью исследования является выявление уреа/микоплазм, то объем мочи должен быть не менее 40-50 мл (это почти полный контейнер).
6. Тщательно закройте контейнер крышкой.
7. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Для анализов №№ 441, 442, 443

1. Вымойте руки с мылом.
2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Объем мочи должен быть не менее 1/3 контейнера.
6. Открутить крышку пробирки «Уро-тампон» и извлечь аппликатор с губкой.
7. Опустить губчатый тампон в образец мочи на 5 секунд, пока губка полностью не пропитается мочой (вар.1) или непосредственно помочиться на тампон (вар. 2).
8. Вернуть аппликатор с тампоном в пробирку и плотно ее закрыть.
9. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Внимание! Губку, находящуюся в пробирке не отжимать.
10. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ

1. Материал собирают не ранее, чем через 2-3 часа после мочеиспускания.
2. Перед взятием мазка из уретры, кожу обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Высушивают стерильной салфеткой.
3. В уретру на глубину 2-4 см аккуратно вводят стерильный тампон на тонком аппликаторе, входящий в состав транспортной системы Эймс с углём. Нежно, но интенсивно вращают им внутри в течение 10 сек., после чего тампон помещают в пробирку со средой.
4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы или трихомонады, для сбора материала используется тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. Клетки и слизь с тампона тщательно суспендируют в соответствующий флакон с жидкой средой (просьба, не путать флаконы для трихомонад и микоплазм).
5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СЕКРЕТ ПРОСТАТЫ

1. Перед сбором материала проводят тщательный туалет наружных половых органов с помощью мыла и кипяченой воды.
2. Проводят ручной массаж простаты через прямую кишку.
3. Материал собирают в стерильную пробирку, а затем используют транспортную систему со средой Эймс с углем. Пропитайте жидкостью стерильный тампон и поместите его в пробирку с транспортной средой.
4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
5. При посеве на трихомонады секрет простаты сначала собирается в стерильный контейнер с крышкой, а затем аккуратно переливается во флакончик с транспортной средой для трихомонад в количестве 0,5-1,0 мл. Можно сразу собрать секрет простаты во флакончик.
6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ЯЗВЫ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА

1. Очищают поверхность язвы тампоном, смоченным физиологическим раствором, корочки удаляют.
2. Производят соскоб язвы до появления серозной жидкости.
3. Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения. (Следует избегать кровоточивости).
4. Надавливают у основания язвы до появления серозной жидкости.
5. Аспирируют выделившуюся жидкость шприцом с тонкой иглой.
6. Материал из шприца переносят на тампон, который потом погружают в пробирку со средой Эймс с углем.
7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА СПЕРМЫ

1. Перед сбором материала тщательно вымойте руки с мылом, а затем проведите туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушите стерильной салфеткой.
2. Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
3. Материал получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер. Если объем полученной спермы очень мал, можно использовать транспортную систему со средой Эймс с углем. Для этого пропитайте жидкостью стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы и поместите его в пробирку со средой. Возможна доставка материала в контейнере.
4. Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта (во избежание вытекания материала).
5. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. При культуральном исследовании на влагалищную трихомонаду предпочтительней исследовать секрет простаты, который собирают в стерильную пробирку и переносят во флакон со средой для транспортировки и культивирования трихомонад. Хранение и доставка осуществляется силами заказчика при температуре 35С в наиболее короткие сроки. При исследовании на гонорею материал хранится и доставляется заказчиком самостоятельно в наиболее короткие сроки при температуре 35С. Срок хранения материала в транспортной среде не более 5-6 часов.

Информация для отоларингологов

Материал не следует брать при воспаленном надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей.

1. Мазок берут натощак или через 2-3 ч после еды и питья.
2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
3. Аккуратно прижимают язык шпателем, стерильным тампоном от транспортной системы Эймс с углем проводят между дужками миндалин, по язычку и задней стенке глотки, не касаясь губ, щек и языка. При наличии гнойных наложений мазок желательно брать на границе здоровых и пораженных тканей (т.к. именно там находится наибольшее количество микробов).
4. Тампон погружают в пробирку с транспортной средой.
5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ НОСА

1. Для обоих носовых ходов используется один тампон с транспортной средой Эймс.
2. Перед взятием мазков не надо промывать носовые ходы.
3. Вводят тампон в носовой ход на глубину 2-2,5 см на уровне носовой раковины.
4. Прижать тампон крылом носа к носовой перегородке и вращательными движениями тампона собирают материал со слизистой носа.
5. Аналогичным образом берут материал в другом носовом ходе.
6. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
7. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ РОТОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА КОКЛЮШ

1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья.
2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
3. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду с тампоном на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120˚, что необходимо для достижения области ротоглотки. Вскрыть упаковку с транспортной средой со стороны крышек, достать пробирку, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться. Держать за крышку.
4. Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят за корень языка вниз и проводят стерильным тампоном по задней поверхности ротоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку и слизистым щек.
5. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
6. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ НОСОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА МЕНИНГОКОКК

1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья.
2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
3. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду с тампоном на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120˚, что необходимо для достижения области носоглотки. Вскрыть упаковку с транспортной средой со стороны крышек, достать пробирку, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться. Держать за крышку.
4. Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят под мягкое нёбо за маленький язычок вверх и проводят стерильным тампоном по передней поверхности носоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку или слизистым щек.
5. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
6. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АСПИРАТ ИЗ ПАЗУХ

1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи, соблюдая правила асептики.
2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
3. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЖИДКОСТЬ ПРИ ТИМПАНОЦЕНТЕЗЕ

1. Очищают наружный слуховой проход слабым раствором антисептика.
2. Если барабанная перепонка не нарушена, ушной канал промывают мыльным раствором, ополаскивают, высушивают, и, используя аспирационную технику, набирают жидкость в шприц. Далее аспират из шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
3. При прободении барабанной перепонки экссудат собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, используя слуховое зеркало.
4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ИЗ НАРУЖНОГО СЛУХОВОГО ПРОХОДА.

1. Обрабатывают кожу 70% спиртом и промывают физиологическим раствором.
2. При помощи влажного (смоченного стерильным физиологическим раствором) тампона из ушного канала удаляют соринки и корки.
3. Материал из очага берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, интенсивно вращая им в наружном слуховом проходе (но осторожно, чтоб не повредить барабанную перепонку).
4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для пульмонологов

Информация для окулистов

Информация для хирургов

10 мл. В педиатрическом флаконе отрицательное давление соответствует объёму 3-5 мл.

Флаконы должны быть промаркированы с указанием фамилии, инициалов, даты рождения и даты взятия материала.

После завершения процедуры йод удаляют с кожи салфеткой с 70% этиловым спиртом и область прокола закрывают лейкопластырем. Попросите пациента подержать руку согнутой в локтевом сгибе для того, чтоб предотвратить образование гематомы. В случаях остро возникшего сепсиса следует проводить 2-3-кратные исследования с интервалом 30-60 мин. Кровь на исследование рекомендовано брать во время подъема температуры, а не на высоте лихорадки.

Источник