Способы контроля автоклавирования контроль стерильности

Устройство и работа парового стерилизатора. Методы контроля стерилизации

Автоклав.Происходит стерилизация горячим паром. Производится в биксах Шиммельбуша. После загрузки биксов автоклав закрывают герметичной крышкой и проводят необходимые манипуляции. Работу контролируют при помощи показателей манометра и термометра. 3 режима: при давлении 1,1 атм t=119,6 – 1 час, 1,5 атм t=126,8 – 45 мин, 2 атм t=132,9 – 30мин. По окончании – биксы немного оставляют в автоклаве для просушки при немного приоткрытой дверце. При извлечении биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках биксов и отмечают дату стерилизации. Закрытый бикс сохраняет стерильность – 72 часа.

Контроль стерильности материала и режима стерилизации в автоклавах прово­дится прямым и непрямым (косвенным) способами.

Прямой способ — бактериологи­ческий; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологи­ческих тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлори­да натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.

Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной тем­пературе. Пробирки вкладывают вглубь бикса, а по окончании стерилизации извле­кают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о сте­рильности материала. Этот тест проводят раз в 19 дней.

Непрямые способы контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120 °С), резорбции (119 °С), антипирин (110 °С). Эти вещества выпускаются в ампулах. Их применяют также в пробирках (по 0,5 г), закры­тых марлевой пробкой. В бикс между слоями стерилизуемого материала закладыва­ют 1—2 ампулы. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указы­вают на то, что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее. Для контроля режима стерилизации в сухожаровых сте­рилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плав­ления: аскорбиновую кислоту (187—192 °С), янтарную кислоту (180—184 °С), пило­карпина гидрохлорид (200 °С), тиомочевину (180 °С).

Более объективным из непрямых методов контроля режима стерилизации является термометрия. В каждый бикс между стерилизуемым материалом укладывают 1— 2 термометра. Их показатели отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции (в течение какого периода эта температура поддерживалась в бик­се), в связи с чем и этот метод не исключает прямого контроля стерильности с ис­пользованием бактериологических тестов.

Хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут хранить­ся в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Источник

Экстренная медицина

Контроль качества автоклавирования осуществляют: 1) бактериологическим методом — постоянные пробы па стерильность материала; 2) с помощью инди­каторных бумажек (метод Микулича)—на обработанной крахмалом бумаге пишут слово «стерилизовано» и опускают бумагу в раствор Люголя. Она при­нимает интенсивно-синий цвет, и надпись становится невидна.

При 115 °С в авто­клаве бумага обесцвечивается, и слово «стерилизовано» становится отчетливо видимым; 3) с помощью порошкообразных веществ, сплавляющихся при дости­жении определенной температуры: сера — 111 —120 СС, антипирин — 113°С, ан­тифебрин — 115°С, мочевина — 132 °С.

Качество обработки хирургических инструментов, шприцев, игл и частей аппаратов определяют как проверкой их стерильности, так и путем постановки бепзидшювой пробы на наличие следов крови.

Бензидиновый реактив годен только в течение часа. В шприц наливают 3 кап­ли бензидннового реактива и несколько раз передвигают поршень, результат оценивается через 3 мин. При наличии малейших следов кровн реактив становит­ся зеленым. Иглы проверяют таким же образом. Через 3 мин реактив выпускают на белую ткань или бумагу; изменение окраски реактива свидетельствует о на­личии следов крови.

Приготовление бензидинового реактива: в пробирку наливают 2 мл ледяной уксусной кислоты,- добавляют немного бензидина и встряхивают смесь, затем добавляют 4 мл 3 % раствора перекиси водорода и снова тщательно встряхи­вают. Качество реактива проверяют нанесением 2 его капель на кровяное пятно. Появление зеленого цвета свидетельствует о пригодности реактива.

Контроль стерильности проводится не реже одного раза в 10—14 дней. По­севы с рук хирургов и операционных сестер, инструментов и различных предме­тов в операционной берут стерильными ватными или марлевыми шариками, смо­ченными стерильным изотоническим раствором натрия хлорида непосредственно перед операцией. Материал помещают в пробирку со стерильным изотоническим раствором натрия хлорида или сахарным бульоном и в тот же день направляют в бактериологическую лабораторию. Персонал не должен знать, когда и у кого будет взят посев.

Посевы воздуха в операционной осуществляют на чашках Петри с питатель­ным агаром или с помощью аппарата Кротова. Открытые чашки расставляют в различных местах операционной на 15 мин. Количество микробов в 1 м3 воз­духа в операционной до работы не должно превышать 500,-а после работы — 1000.

Перевязочный материал доставляют в лабораторию в закрытых биксах после стерилизации.

Посевы с шовного материала осуществляют до стерилизации, во время нес и в процессе хранения — не реже одного раза в 10 дней. Забор материала про­водится с соблюдением всех правил асептики. Каждую пробу берут отдельным инструментом и помещают в стерильную пробирку. Материал признается сте­рильным, если рост микробов не получен.

Результаты посевов фиксируют в специальном журнале, где указывают дату посева, характер исследуемого материала, способ стерилизаций, отмечают полу­ченный результат и указывают фамилию производившего исследование.

Справочник хирурга поликлиники. Кутушев Ф. Х., Либов А. С. Мичурин Н.В., 1982г.

Источник

Способы контроля автоклавирования контроль стерильности

7. Стерилизация. Методы контроля стерилизации

Третьим этапом обработки изделий медицинского назначения является стерилизация. Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а так же медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизация — это полное освобождение медицинского инструментария от микроорганизмов, включая споровые формы.

Кипячение как метод стерилизации запрещен!

Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ

Водяной насыщенный пар под избыточным давлением

Сухой горячий воздух

Среда нагретых стеклянных шариков

Окись этилена или ее смесь с другими компонентами

Пары перекиси водорода в сочетании с их низкотемпературной плазмой

Растворы химических средств (альдегид -, кислород — и хлорсодержащие)

1. Паровой метод проводится в паровом стерилизаторе (автоклаве) с соблюдением следующих режимов:

• 120 градусов — 1,1 атм. — 45 минут ( режим щадящий для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов);

• 132 градуса — 2,0 атм. — 20 минут (для изделий из коррозионностойкого металла, стекла, резины).

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов, стекла, перевязочный материал, изделия из резины, латекса и отдельных видов пластмасс.

Применяемые упаковки и сроки сохранения стерильности:

• 2-х слойная бязевая (упаковочный материал используют однократно);
• биксы с фильтром — 20 суток;
• бумажные, комбинированные и пластиковые стерилизационные упаковочные материалы
• Комбинированные прозрачные упаковки изготавливаются из прозрачной многослойной пленки и специальной медицинской бумаги. Обладают превосходной проницаемостью для пара и газа и служат отличным препятствием для бактерий.
• Виды комбинированной упаковки: пакеты и рулоны, плоские и со складкой, а также самогерметизирующиеся пакеты.
  Для контроля качества работы автоклава применяются следующие тест-индикаторы:

• термовременная лента ИС 120/ 45, 132/ 20;
• бензойная кислота (при правильно приведенной стерилизации кислота становится фиолетового цвета, закладывается в каждую упаковку по 3 ампулы);
• мочевина.

2. Воздушный метод проводится в сухожаровом шкафу с соблюдением следующих режимов:

• 180 градусов — 1 час;
• 160 градусов — 150 минут (2,5 часа).

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, изделия из силиконовой резины. Перед стерилизацией изделия после предстерилизационной очистки высушивают в сушильном шкафу при температуре

Применяемые упаковки и сроки сохранения стерильности:

• открытый способ — должны быть использованы непосредственно после стерилизации.
• полиамидные рулоны из прозрачной жаростойкой полиамидной пленки.
• бумажные пакеты

недостатки:
— вскрытие упаковки возможно только с помощью ножниц, т.к. разрыв может привести к загрязнению стерильного материала бумажными волокнами;
— неудобство пользования из-за невозможности визуального контроля содержимого упаковки;

— ограничение области применения, так как могут легко повреждаться;

— сроки сохранения стерильности в них весьма ограничены.

Листовые оберточные материалы предназначены для упаковывания крупных изделий, комплектов инструментов и хирургического белья, а также формирования наборов инструментов для отделений, при использовании двойной упаковки. Выпускается крепированная бумага белого и зеленого цветов, а также листовые нетканые оберточные материалы — мягкий голубой и сверхмягкий зеленый. Различный цвет бумаги предназначен для удобства пользования потребителя и никаких различий кроме цвета не имеет.

Для контроля качества работы сухожарового шкафа используются следующие тест-индикаторы:

• ИС – 180 С
• ИС – 160С
• гидрохинон (при правильной стерилизации расплавляется и становится черного цвета);
• тио мочевина (из желтого цвета переходит в оранжевый).

Используют альдегид содержащие, кислородсодержащие, некоторые хлорсодержащие средства, обладающие споро цидным действием.

• 1 % раствор «Дезоксона -1» при температуре + 18° в течение 45 минут;
• 6 % раствор перекиси водорода при температуре +18° в течение 6 часов;
• 6 % раствор перекиси водорода при температуре +50° в течение 3 часов.

Химический метод применяют для стерилизации изделий из термолабильных материалов, изделия должны быть сухими (во избежание разбавления рабочих растворов).

Используются стерильные емкости, стерилизацию проводят, строго соблюдая правила асептики

Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается. Стерилизация должно проводиться при полном погружении изделий в раствор, после чего они должны быть отмыты стерильной питьевой водой и высушены

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных химическим методом – используются сразу, или в стерилизационной коробке с фильтром, выложенной стерильной простыней — 3 суток.

Хранить стерильные изделия в 70 % этиловом спирте нельзя, т.к. он не оказывает

стерилизующего действия, и в нем могут выжить споры микробов.

— используется 16 % раствор формалина, окись этилена, формальдегид, озон.

Используются комбинированные прозрачные упаковки, изготовленные из прозрачной многослойной пленки и специальной медицинской бумаги.

5. Радиационный метод

— применяется в промышленном производстве.

6. Плазменный метод — используются стерилизующие средства на основе перекиси водорода в плазменных стерилизаторах.

Стерилизуют хирургические, эндоскопические, оптические устройства и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс, стекла и кремния.

7.Гласперленовые стерилизаторы допускается применять в стоматологических медицинских организациях и косметологических кабинетах. Стерилизуют боры и другие мелкие инструменты при полном погружении их в среду нагретых стеклянных шариков (температура 240 градусов).

8. Инфракрасным методом стерилизуют стоматологические и некоторые инструменты из металла.

Обеспечение проведения дезинфекционных и стерилизационных мероприятий

В целях защиты пациентов и персонала от ВБИ организуется и проводится производственный контроль соблюдения требований стерилизационных мероприятий.

Производственный контроль включает:

• Наличие в организации официально изданных санитарно-эпидемиологических правил и нормативов;
• Назначение ответственных лиц;
• Контроль наличия в организации документов, подтверждающих безопасность и безвредность;
• Визуальный контроль должностными лицами за выполнением санитарно-эпидемиологических мероприятий.

Критерием оценки качества проведения дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в ЛПО являются:

Отрицательные результаты посевов проб со всех объектов внутрибольничной среды (в том числе контроль стерильности);

Показатели обсемененности воздуха.

Отсутствие в помещениях ЛПО членистоногих, грызунов.

Методы контроля стерилизации

1. Технический — используются максимальные термометры (периодическая проверка).

2. Термический ( химический) — использование индикаторов.

3. Бактериологический – самый точный, основан на выращивании микроорганизмов с посевов, взятых с перевязочного материала, белья, медицинской одежды, рук, инструментария или на применении бактериологических тестов для контроля стерилизации.

Химические индикаторы для контроля качества стерилизации:

С января 2002 года в России введен в действие ГОСТ Р ИСО 11140-1 «Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы. Общие требования».

Согласно этого документа химические индикаторы распределены на шесть классов.

Индикаторы 1-го класса являются индикаторами («свидетелями») процесса. Примером такого индикатора является термоиндикаторная лента, наклеиваемая перед проведением стерилизации на текстильные упаковки или стерилизационные коробки. Изменение цвета ленты указывает, что упаковка подверглась воздействию процесса стерилизации. Такие же индикаторы могут помещаться в наборы хирургических инструментов или операционного белья.

2-й класс индикаторов предназначен для использования в специальных тестовых процедурах. Этот тест не контролирует параметры стерилизации, он оценивает эффективность удаления воздуха из камеры парового стерилизатора.

Индикаторы 3-го класса являются индикаторами одного параметра. Они оценивают максимальную температуру, но не дают представления о времени ее воздействия.

4-й класс — это многопараметровые индикаторы. Они содержат красители, изменяющие свой цвет при сочетанном воздействии нескольких параметров стерилизации, чаще всего — температуры и времени.

5-й класс — интегрирующие индикаторы. Эти индикаторы реагируют на все критические параметры метода стерилизации. Характеристика этого класса индикаторов сравнивается с инактивацией высоко резистентных микроорганизмов.

6-й класс — индикаторы-эмуляторы. Эти индикаторы должны реагировать на все контрольные значения критических параметров метода стерилизации.

Источник